Effects of Various Light Sources on the Carotenoid and Glucosinolate Contents in Chinese Cabbage (Brassica rapa L. ssp. pekinensis)

서 론

배추(Brassica rapa L. ssp. pekinensis)는 배추과(Brassicaceae)에 속하는 두해살이 잎줄기채소로 국내 채소류 소비량의 25%를 차지하고 있는 우리나라의 대표적인 채소로 기능성 물질인 carotenoids와 glucosinolates(GSLs)를 포함하고 있다(Hwang, 2010).

LED (Light-emitting diode)는 다른 인공 광원인 형광등, 백열등 등에 비해 열 발생과 전력소모량이 적으면서 수명도 길다. 또한 다른 광원에 비해 식물체 생장 및 유효 광합성에 대해 필요한 특정 파장을 혼합한다거나 혼합 비율을 임의로 조절 가능하여 작물 재배 연구에 많이 이용되고 있다(Heo et al., 2013). LED를 사용하여 특정 파장을 혼합하는 등의 기술을 사용한 식물 재배는 식물체 내의 생리학적 반응과 carotenoid, GSL와 같은 이차대사산물 생산에 여러 가지 중요한 영향을 미친다(Lefsrud et al., 2008). 빛의 파장 중 적색광(630 ~ 780 nm)은 엽록소가 광합성 중에 흡수하는 파장인 660 nm에 근접하기 때문에 식물 생장에 아주 유효하며, 식물 재배 시 단일 적색 LED광에서 자란 식물은 단일 청색 LED광에서 자란 작물보다 엽수가 많았고 초장이 길었으며 식물생장에 현저한 차이를 보였다(Matsuda et al., 2004; Massa et al., 2008). 빛의 파장 중 청색광(450~500 nm) 역시 식물 줄기신장, 잎의 기공 개폐, CO₂ 교환과 같은 식물 생장에 중요한 역할을 담당한다(Schwartz and Zeiger, 1984). 적색광에 청색광을 혼합하면 잎에서 기공 전도도와 광합성 효율이 증가함을 밀 재배 실험을 통해 보고되었고(Goins et al., 1997), 이러한 실험결과는 청색광 역시 잎의 광 형태 형성과 건물 생산에서 중요한 역할을 한다는 것을 보여준다(Yorio et al., 2001; Matsuda et al., 2004).

Carotenoid는 기본 골격이 탄소 40개로 이루어진 유기분자이며 polyene chain과 최대 15개 중합된 이중 결합을 가진다(Hirschberg, 2001). 배추과에 함유된 carotenoid는 생리활성물질로 중요성을 가질 뿐 아니라, 강력한 항산화 활성이 있어 각종 질병으로부터 신체를 보호하는 역할을 한다(Miglio et al., 2008). Carotenoid는 청색광(400~500 nm)을 흡수하여 엽록소로 전달하는 식물 생육에 필수적인 광 수확(light harvesting)에 관여하고 항산화 기작인 광 보호 기능을 통해 활성산소 생성을 방지하고 세포막 손상을 방지한다(Lee et al., 2010).

GSLs는 배추과 식물들의 이차대사산물로서 황과 질소를 함유한 배당체이며 곁사슬 R기의 종류에 따라 약 200종 이상 존재한다고 알려져 있다(Clarke, 2010). GSLs는 7종의 아미노산(alanine, methionine, valine, leucine, isoleucine, phenylalanine, tryptophan)으로부터 생합성 되고(Fahay et al., 2001), methionine으로부터 유래한 aliphatic GSLs, tryptophan으로부터 유래한 indolic GSLs, phenylalanine으로부터 유래한 aromatic GSLs 이렇게 3가지로 분류된다(Halkier and Du, 1997; Huseby et al., 2013). 배추과 작물이 항암 효과를 갖는 것은 GSL 함유와 밀접한 연관이 있는 것으로 연구되고 있는데 이러한 배추과 식물체 내의 GSL 함량은 기후조건, 영양상태, 재배방법 등에 따라 차이가 있다(Fenwick et al., 1983).

최근 온실 및 스마트 농업이 발달 하여 재배환경 조건 제어가 가능하기 때문에 LED 및 형광등을 사용하여 광 조건 제어가 가능해졌다. 그렇지만 LED만을 사용한 경우 초기 설비투자가 노지 재배에 비해 수십 배의 비용이 소모되며 광량이 충분하지 않을 때도 있다. 이에 본 논문에서는 자연광과 인공광을 병행하여 응용하고자 하였다. 따라서 본 연구는 다양한 광원을 이용해 결구 배추 내 carotenoid와 GSL 함량 변화를 알아보기 위해 아크릴 상자 3종류(적, 청, 투명)를 이용한 태양광 실험[실험 I]과 식물 생장기(growth chamber) 내에서 LED(적, 청, 적+청 혼합)와 형광등을 이용하여 인공광원 실험[실험 II] 2가지를 수행하였다.

재료 및 방법

시약

Ethanol (C₂H₅OH), Hexane (C₆H₁₄)은 Fisher Scientific Korea, Ltd. (Seoul, Korea)에서, dichloromethane (C₂H₅Cl₂)은 Merck KGaA (Dermstadt, Germany)에서 구입하였다. Acetonitrile (CH₃CN), methanol (CH₃OH)은 J.T. Baker Chemical Co. (Phillipsburg, NJ, USA)것을, ethyl acetate (CH₃COOC₂H₅)는 Burdick & Jackson (Ulsan, Korea)것을 사용하였다. Sodium acetate (NaC₂H₃O₂·3H₂O)은 Samchun Pure Chemical Co., Ltd. (Pyeongtaek, Korea)에서, potassium hydroxide (KOH)는 Daejung Chemicals & Metals Co., Ltd. (Siheung, Korea)에서 구입하였다. 루테인과 제아크산틴 표준품은 Sigma-Aldrich Chemical Co. (St Louis, MO, USA)것을, α-카로틴과 β-카로틴 표준품은 Wako Pure Chemical Industries, Ltd. (Osaka, Japan)것을 사용하였다. 컬럼 충진물인 DEAE-Sephadex A-25는 GE Healthcare Bio-Sciences AB (Uppsala, Sweden)에서, Sinigrin (2-propenyl GSL)과 aryl sulfatase (type H-1, EC 3.1.6.1)는 Sigma-Aldrich Chemical Co. (St Louis, MO, USA)에서 구입하였다.

아크릴 상자(field)를 이용한 태양광 실험 [실험 Ⅰ]

㈜배추와 육종의 종자를 사용하였고, 충남대학교 농업생명과학대 유리온실에서 2015년 8월 10일에 파종하였다. 파종은 트레이(plug tray, 50구)에 원예용 상토(High, ㈜부농, 경주, 한국)를 채운 후 물을 적시고, 핀셋을 이용해 작은 구멍을 만든 후 배추 종자를 심은 다음 다시 상토로 덮어주었다. 습도를 유지하기 위해 신문지로 덮고, 물로 적신 후 싹이 나면 신문지를 제거하였다. 파종 30일 후(DAS, day after sowing)에 50개 유묘 중 48개를 골라 노지에 이식하였다. 대조구(field control, FC)를 노지에 있는 배추로 하고, 실험구는 투명(field transparency, FT), 적색(field red, FR), 청색(field blue, FB)의 아크릴 상자를 씌워 4주간 광처리를 진행한 후(Fig. 1), 110 DAS에 수확하였다. 수확한 배추는 생육상태(가식부 중 가장 큰 잎의 엽장, 엽폭, 생체중)를 측정한 뒤 -70℃ 급속 초저온 냉동고(SFDSF 12, Samwon Freezing Engineering Co., Busan, Korea)에 보관하여 동결건조한 후에 막자와 막자사발로 분말하였다.

식물 생장기(growth chamber)를 이용한 인공광원 실험 [실험 Ⅱ]

인공광원 실험에서는 태양광 재배실험과 같은 일시에 배추를 파종하여 유묘를 키우고, 36 DAS에 소형 포트(15×15×19 cm³)로 이식하여 충남대학교 농업생명과학대학 부속 유리온실에 두었다. 대조구(chamber control, CC)는 온실에서 계속 재배하였고 실험구는 식물생장환경조절장치(Growth Chamber) 내에서 LED 적색광(chamber red, CR), LED 청색광(chamber blue, CB), LED 적+청 혼합광(chamber red+blue, CRB), 형광등(chamber fluorescent, CF)으로 7일간 처리하였다(103 DAS~109 DAS)(Fig. 2). 평균 광량은 160~180 μmol · m^-2 · s^-1, 광주기는 주/야 11/13 h, 온도는 식물 생장기의 자동 온도조절 시스템을 이용하여 주/야 12/10℃로 설정하였으며 상대습도는 60~70%를 유지하였다. 총 재배 기간이 110 DAS 이었다. 수확한 배추는 생육상태(엽장, 엽폭, 생체중)를 측정한 뒤 -70℃ 급속 초저온 냉동고(SFDSF 12, Samwon Freezing Engineering Co., Busan, Korea)에 보관하여 동결건조한 후에 막자와 막자사발로 분말하였다.

Carotenoid 추출 및 HPLC 분석

분말 시료 500 mg을 칭량하여 50 mL-Falcon tube에 넣고 ethanol 5 mL를 넣은 후, 진동혼합(vortex)하여 항온수조(75℃)에서 5분간 진탕하였다. 이후 80% KOH 1.5 mL를 넣고 진동혼합하여 다시 한 번 항온수조(75℃)에서 10분간 진탕하였다. 진탕 후 얼음에 넣고 반응이 정지할 수 있을 만큼 충분히 정치시켰다. 그리고 초순수와 hexane을 각 2.5 mL를 넣고 진동혼합(vortex)한 뒤, 원심분리(3,000 rpm, 3 min)를 실시하였고 분리된 상층액(hexane층)을 수거하였다. 위 과정을 동일하게 2회 더 반복하여, 총 3회 실시하였고 각 상층액을 수거하여 합하였다. 합한 상층액은 감압 농축기(4 0℃)로 농축한 후에, dichloromethane : methanol= 50:50(v/v) 1 mL를 넣고 sonicator에서 충분히 재용해 하였다. 이 재용해한 용액을 0.45 μm hydrophilic PTFE syringe filter (직경 13 mm)로 여과한 후, HPLC용 갈색 vial병에 담아 HPLC로 분석하였다. Carotenoid의 분석 컬럼은 YMC carotenoid C30 column (250×4.6 mm I.D., particle size 5 μm)을 사용하였고 HPLC (Perkin Elmer Flexar, Inc., MA, USA)를 이용하여 분석하였다. 검출 파장(detective wavelength) 454 nm, 유량(flow rate) 1.0 mL/min, 컬럼 온도(column temperature) 40℃로 설정하여 분석하였고, 시료는 10.0 μL 주입하였다. 이동상 용매는 solvent A [water: methanol=25:75 (v/v)]와 solvent B (ethyl acetate)로 사용하였다. 용매 구배는 solvent B를 60%로 시작하여 4분에 70%까지 증가시켰으며, 9분에 75%로 증가시켜 이후 20분까지 유지시켰고, 23분에 100%까지 증가시켜 28분까지 유지시키고, 28.1분에 60%까지 급격히 감소시킨 후 35분까지 유지시켰다. 외부표준물질은 4가지(루테인, 제아크산틴, α-카로틴, β-카로틴)를 사용하였고 이에 대응하는 각 시료의 HPLC 피크면적(area)을 비교하여 정량하였다.

GSL 추출 및 HPLC 분석

분말 시료 100 mg을 칭량하여 2.0 mL-Eppendorf tube에 넣고, 70%(v/v) boiling methanol 1.5 mL를 넣어 진동혼합(vortex)하였다. 진동혼합 후 항온수조(75℃)에서 5분간 조(crude) GSLs를 추출하였다. 이 후 2.0 mL-Eppendorf tube를 원심분리(12,000 rpm, 4℃, 10 min)하였고 분리된 상층액은 시험관(test tube)에 수거하였다. 위 과정을 동일하게 2회 더 반복하여, 총 3회 실시하였고 각 상층액을 수거하여 합하였다. Mini-column (1000 μL pipet tip)은 아래 부분을 탈지면으로 막은 다음 활성화된 DEAE Sephadex A-25를 5 cm가량 채운 뒤 GSLs 조 추출물(crude extract)을 pasteur pipet으로 로딩 하였다. 추출물이 빠져나가면 초순수 2 mL를 pasteur pipet으로 로딩 하였다. Mini-column 아래 끝 부분을 paraffin film으로 새어나가지 않게 막고, aryl sulfatase solution 75 μL을 넣은 뒤 16~18시간 동안 상온에 정치 한 후, 2.0 mL-Eppendorf tube에 초순수 0.5 mL로 3회 반복하여 용출하였다. 용출시킨 시료는 0.45 μm hydrophilic PTFE syringe filter로 여과한 후, HPLC용 갈색 vial병에 담아 HPLC로 분석하였다. GSL의 분석 컬럼은 Inertsil ODS-3 column (150×3.0 mm I.d., particle size 3 μm), 가드 컬럼은 Inertsil ODS-2 Cartridge Guard column E (10×2.0 mm I.d., particle size 5 μm)(GL Science, Tokyo, Japan)을 사용하였고 HPLC (Agilent Technologies, CA, USA)를 이용하여 분석하였다. 분석조건은 검출 파장(detection wavelength) 227 nm, 유량(flow rate) 0.4 mL/min, 컬럼 온도(column temperature) 40°C로 설정하여 분석하였다. 시료는 10.0 μL 주입하였다. 이동상 용매는 solvent A (초순수)와 solvent B (acetonitrile, CH₃CN)를 사용하였다. 용매 구배는 solvent B를 기준으로 실시하였고, 총 27분간의 분석 시간이 소요되었다. Solvent B는 처음 2분까지는 0%로 유지시키고 7분에 0%에서 10%로 증가시키고, 16분에는 10%에서 31%로 증가시켰다. 19분에는 31%를 유지시키고 21분까지 31%에서 0%로 감소, 27분에는 0%를 유지시켰다. GSL 함량은 각 시료를 3반복으로 분석하고 외부표준물질인 sinigrin의 HPLC 피크 면적(area)을 비교하여 각 성분의 response factor를 반영 후 정량하였다(ISO 9167-1, 1992).

통계 분석

생육조사 및 carotenoid, GSL 분석 결과는 Microsoft Office Excel 2010을 이용하여 각 성분에 대한 함량의 평균 값(average value)과 표준편차(SD, standard deviation)를 구하였다. 통계처리 프로그램은 IBM SPSS^Ⓡ 21 Statistics을 사용하였고, 사후 분석은 유의수준(P)은 0.05 이하로 설정하여 Tukey 검정법을 사용하였다.

결과 및 고찰

배추의 생장

[실험 I] 아크릴 상자를 이용한 태양광 실험에서 대조구(field control, FC), 투명(field transparency, FT), 적색(field red, FR), 청색(field blue, FB) 중에 엽장은 FR 처리구(30.0)에서 가장 길었으며 FT 처리구(24.0 cm)에서 가장 짧았다(Table 1). 엽수는 FR 처리구(42.3)에서 가장 많았고 FC 처리구(35.3 장)에서 가장 적었다. 적색광(640~690 nm) 파장은 광합성을 촉진시키는 파장이며 청색광(420~470 nm) 파장은 잎의 형태형성을 촉진시키는 파장이라는 연구결과가 있는데(Bang et al., 2012), [실험 I]에서도 FR 처리구(18.0) 보다 FB 처리구(19.1 cm)에서 엽폭이 넓고 형태 형성이 컸다. FT 처리구에서 구고(18.0 cm)와 구폭(11.8 cm)이 다른 처리구보다 가장 작았다. 생체중은 FC 처리구(225)가 가장 높았으며 FT 처리구(135 g)가 가장 낮았고, 건조중 또한 FC 처리구(17.0)에서 가장 높았고 FT 처리구(10 g)에서 가장 낮았다.

[실험 II] 식물 생장기(growth chamber) 내에서 LED(적, 청, 적+청 혼합)와 형광등을 이용한 인공광원 실험에서 대조구(chamber control, CC), 형광등(chamber fluorescent, CF), LED 적색광(chamber red, CR), LED 청색광(chamber blue, CB), LED 적+청 혼합광(chamber red+blue, CRB) 중에 엽장은 CC 처리구(39.6)에서 가장 길었으며, 엽폭은 CC 처리구(27.3)에서 가장 넓었다. 엽수는 CR 처리구(45.0)에서 가장 많았다. 생체중은 CF 처리구(280.2)에서 가장 높았다. 형광등 조사는 LED 광원에 비해 광파장 대역이 다양하기 때문에 작물의 생육에 좋다고 보고되었는데(Park et al., 2012), [실험 II]에서도 생체중을 비롯한 구고, 구폭, 구중에서도 LED 처리구에 비해 높은 경향이 나타났다.

아크릴 상자의 파장 분석

적색 아크릴을 상자의 파장을 분석한 결과, 가시광선에서 청색계열의 파장대의 투과율은 20~30%였고 적색계열 파장대인 630~780 nm에서는 투과율이 90%로 나타났다(Fig. 3). 청색 아크릴 상자의 파장은 가시광선에서 적색계열 파장대의 투과율은 20~30%였고 청색계열 파장대인 430~490 nm에서는 투과율이 75~85%로 나타났다. 투명 아크릴 상자 파장 분석에서는 가시광선의 모든 파장대의 투과율이 90%가 넘었다. 즉 정확한 파장의 파장의 선택적 투과는 어려우나 적색 아크릴 상자 같은 경우는 적색계열의 파장대에 투과가 잘 되었고, 청색 아크릴 상자 같은 경우는 청색계열의 파장대가 투과가 잘 되었다. 그리고 각 아크릴 상자의 파장은 가시광선의 흡수 파장은 다르지만 자외선 영역에서의 흡수 파장은 유사하였다.

광원에 따른 carotenoid 함량

배추 내 carotenoid를 HPLC로 분석한 결과, carotenoid 중 3종류(루테인, 제아크산틴, β-카로틴)가 검출되었다(Fig. 4). [실험 I]에서 배추의 총 carotenoid 함량 범위는 루테인 25.39~58.80, 제아크산틴 0.84~4.22, β-카로틴 3.85~18.71 mg/kg dry wt.이었다(Table 2). 루테인의 함량은 FC 처리구가 53.67로 가장 높았고, FT 처리구가 28.31 mg/kg dry wt.로 가장 낮았다. β-카로틴의 함량은 FC 처리구에서 가장 높았고 (16.06), 광원 처리구에서는 FB 처리구(13.12)가 FR 처리구(5.38), FT 처리구(5.79 mg/kg dry wt.)보다 약 2.4배 높았다. [실험 I]의 carotenoid 함량은 모두 FC 처리구에서 가장 높았는데 그 이유는 아크릴 상자로 인해 태양빛의 자외선을 강하게 받았기 때문인 것으로 판단되며, 이는 다른 실험에서 나타난 결과인 식물은 때때로 잎에서 α-카로틴과 β-카로틴의 비율이 태양빛을 덜 받은 그룹에 비해 낮거나 α-카로틴이 거의 검출되지 않았던 결과(Susan and Olle, 1990)와 유사한 것으로 판단된다. 또한 본 실험에 사용된 노지의 영양 균형 및 기후조건, 토양 배수 문제와 같은 타 조건의 변수에서 기인한 것이라 사료되어 좀 더 많은 연구가 필요할 것으로 판단된다.

[실험 II]에서 배추의 총 carotenoid 함량 범위는 루테인 24.66~137.96, 제아크산틴 2.51~20.65, β-카로틴 8.40~49.80 mg/kg dry wt. 이었다(Table 2). 루테인의 함량은 108.35 mg/kg dry wt.로 가장 높았다. β-카로틴의 함량은 CR 처리구에서 38.74로 가장 높았고, CF 처리구에서 14.96 mg/kg dry wt.로 가장 낮았다.

총 carotenoid 함량은 CR 처리구(156.62)와 CB 처리구(115.90 mg/kg dry wt.)가 다른 처리구보다 약 1.6~2.3배 높았는데, 이것은 적색광과 청색광이 식물의 이차대사산물의 생산과 축적에 관여하는 유전자 발현을 유도하거나 촉진한다는 보고와 관련된 것으로 보인다(Kim et al., 2013). CR 처리구에서 특히 β-카로틴 함량이 높은 결과는 적색광이 β-카로틴 발현을 유도하였다는(Wu et al., 2007) 이전의 생리학적 연구와도 상응하는 결과였다. [실험 I]의 처리구보다 [실험 II]의 처리구에서 carotenoid 함량이 높았는데, 이것은 LED나 형광등을 이용해 보광 가능하며 특정 광질을 선택적으로 조사 할 수 있는 인공광원이 효과적이며 작물발아 및 생장, 기능성물질의 함유량 증가와 상관관계가 있다(Heo et al., 2010)는 연구 결과와 유사한 것으로 판단된다.

광원에 따른 GSL 함량

배추 내 GSLs를 HPLC로 분석한 결과, 9종의 GSLs(progoitrin, glucoalyssin, gluconapoleiferin, gluconapin, glucobrassicanapin, glucobrassicin, 4-methoxyglucobrassicin, gluconasturtiin, neoglucobrassicin)를 분리 및 동정 하였다(Table 3 and Fig. 5). [실험 I]의 총 GSL 함량은 FT 처리구가 19.76으로 가장 높았고, FR 처리구가 11.39 μmol/g dry wt.로 가장 낮았다(Table 4). FT 처리구의 glucobrassicin 함량은 3.74로 FR 처리구의 glucobrassicin 함량 1.68 μmol/g dry wt.보다 약 2배 높았다. Glucobrassicin은 indole-3-carbinol의 전구체로, indole-3-carbinol은 배추과 특이 이차대사산물 중 주요한 항암예방물질 중 하나이다(Zhang et al., 1994). 또한 사람에게 광범위한 암 억제 및 예방 효과를 가지며 식물의 방어 기작에도 관여한다는 보고가 있었다(Brew et al., 2009; Pedras et al., 2006). FT 처리구의 neoglucobrassicin 함량은 8.58 μmol/g dry wt.으로 다른 처리구에 비해 약 3배 높았다. [실험 Ⅰ]의 GSL 성분 비율은 neoglucobrassicin이 FC 처리구에서 25%, FT 처리구에서 43%로 가장 높았고, 4-methoxyglucobrassicin이 FR 처리구와 FB 처리구에서 29%로 가장 높았다.

[실험 II]의 총 GSL 함량은 CC 처리구(4.59)와 CRB 처리구(4.19)에서 높았고, CF 처리구(2.88 μmol/g dry wt.)에서 가장 낮았다(Table 4). Gluconapin은 CR 처리구(0.33)와 CRB 처리구(0.28)에서 CC 처리구(0.09 μmol/g dry wt.)보다 약 3.5배 높았으며, 발암 물질을 억제하는 isothiocyanate의 전구체로 알려져 있다(Padilla et al., 2007). CRB 처리구에서는 모든 GSL 성분이 검출되었고, 총 GSL 함량(4.19 μmol/g dry wt.)이 다른 실험구보다 1.4배 높았다. [실험 II]의 GSL 성분 비율은 모든 처리구에서 4-methoxyglucobrassicin이 45~60%로 가장 높았고, neoglucobrassicin이 9~20%로 두 번째로 높았다. [실험 I]의 GSL 함량은 FT 처리구에서 전반적으로 높았는데 이것은 투명 아크릴이 가시광역 전 파장에 높은 투과율을 보였기 때문에 함량이 높아진 것으로 판단되며, [실험 II]에서는 복합광인 CRB 처리구에서 단일광인 CR, CB 처리구에 비해 GSL 함량이 높았다. 상기 연구의 결과는 다양한 광원별 이차대사산물의 함량분석이나 단일 또는 혼합(적색+청색) 파장 영역의 선택이 가능한 LED를 적절히 이용할 수 있는 조건을 규명함으로써 함량 분석에 관해 광원을 효과적으로 적용할 수 있을 것이며, 배추 이외 다른 배추과 작물이나 다양한 작물의 재배에도 응용 가능할 것으로 판단된다.

Note

The authors declare no conflict of interest.

ACKNOWLEDGEMENT

This work was supported by research fund of Chungnam National University.

Tables & Figures

Fig. 1. Sunlight with acrylic treatment of experiment group. (a), red acryl; (b), blue acryl; (c), clear acryl (Experiment I).

Fig. 2. Artificial light source (LED) treatment of experiment group. (a), chamber red light (CR); (b), chamber blue light (CB); (c), chamber red+blue light (CRB); (d), chamber fluorescent lamp (CF) (Experiment II).

Table 1. Plant growth of Chinese cabbage in all treatments

^a) Within each column values follow by the same small letters are not significantly different at P<0.05, using Tukey’s multiple-range test. (n=4, except for CF n=3). Each means that FC, field control; FT, field transparency; FR, field red; FB, field blue; CC, chamber control; CF, chamber fluorescent; CR, chamber red; CB, chamber blue; CRB, chamber red+blue.

Fig. 3. Transmittance of acrylic box. (a), red acrylic box; (b), blue acrylic box; (c), transparent acrylic box.

Fig. 4. HPLC chromatograms of carotenoids separated from Chinese cabbage. (a), Carotenoid standards; (b), CRB treatment. Peak 1, Lutein; 2, Zeaxanthin; 3, α-carotene; 4, β-carotene.

Table 2. Carotenoid contents (mg/kg dry wt.) of various light source treatment in Chinese cabbage (Experiment I and II)

^a) Within each column values follow by the same small letters are not significantly different at P < 0.05, using Tukey’s multiple-range test. (n=4, except for CF n=3). Each means that FC, field control; FT, field transparency; FR, field red; FB, field blue. CC, chamber control; CF, chamber fluorescent; CR, chamber red; CB, chamber blue; CRB, chamber red+blue.

Table 3. Glucosinolates identified in Chinese cabbage with different light sources

^a) No, the elution orders of HPLC analysis. ^b) RT,retentiontime (min). ^c) As a desulfo-glucosinolate. ^d) The international organization for standardization (ISO 9167-1,1992).

Fig. 5. HPLC chromatograms of glucosinolates separated from Chinese cabbage. (a), sun-light (field control) and (b), artificial-light (growth chamber control). Peak 1, Progoitrin; 2, Glucoalyssin; 3, Gluconapoleiferin; 4, Gluconapin; 5, Glucobrassicanapin; 6, Glucobrassicin; 7, 4-Methoxyglucobrassicin; 8, Gluconasturtiin; 9, Neoglucobrassicin.

Table 4. Glucosinolate contents (μmol/g dry wt.) of various light source treatment in Chinese cabbage (Experiment I and II)

^a) Within each column values follow by the same small letters are not significantly different at P<0.05, using Tukey’s multiple-range test (n=4). Each means that FC, field control; FT, field transparency; FR, field red; FB, field blue. CC, chamber control; CF, chamber fluorescent; CR, chamber red; CB, chamber blue; CRB, chamber red+blue. ^b) ND, not detected.

References

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